温州100K超滤离心管生产厂商

当浓缩到剩下1ml时，取50ul缓冲溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mgml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。使用超滤离心管时，应注意控制转速，以避免过度旋转导致超滤膜损坏或溢出样品。温州100K超滤离心管生产厂商

超滤离心管从细胞培养上清液中浓缩蛋白，在园子里找到一些关于浓缩蛋白的一些帖子，但还有些问题还是向园子里的大虾请教一下。我们定的是 15ml规格的管子，不知道有没有谁以前做过的，有关于转速，时间给一些建议，另外细胞上清液离心前是否需要什么预处理？离心之后回收蛋白时怎么尽量减少损失？如果要把管子重复利用，NaoH清洗后，如何在20%的乙醇中保存？是将其浸到乙醇中防于4度，还是在管子中灌入乙醇？我用过5ml的管子，当时使用的转速是4000rpm 8min，可以把5ml的样品液浓缩到约200ul，这只供参考，具体情况还要由您的样品决定。我保存5ml管子的方法是把内管取出，浸泡于装有20％乙醇的烧杯中。四度保存。台州离心管厂家直销超滤离心管通常具有不同材质的选择，以适应不同化学环境下的使用需求。

使用后用0.1M NaOH泡24h，然后20%乙醇浸泡保存。这个我是听老板们说的，的确乙醇泡完后孔径会增大，基本就是5-10KD较大，也就是说如果你的蛋白在21KD以上，应该没问题。或者可以不用乙醇泡，用NaOH洗之后直接用无菌水保存，每周换一下液体，应该没有问题。看看说明书不就结了！我原来在CRO的时候一直是重复用的，也没见什么不好啊！短期会用的话，用20%的乙醇泡着，回头拼命用millipore的水充干净，然后在用样品缓冲液平衡一下就好，至于有些人说的改变孔径，也没那么大影响的，你至少跟目的蛋白分子量差别3倍的截留分子量才安全的不是吗?1个月以内不用的话，建议用100mM的NaOH保存！更长时间的话加0.02%的叠氮钠，但那个东西强致疾病物，不建议使用。理论上截留目标物，孔径应选1/3~1/5的膜；透过目标物，孔径应选5-10倍的膜。

一般来说，超滤的回收率可达90%以上。样本损失大多是由于滤膜表面和容器表面的非特异性吸附引起的。因此，选择口碑好、优良品质的浓缩离心管非常重要。作为过滤方面的老牌公司，提供了多种浓缩离心管，可对50 μl到60 ml的样本进行高效的浓缩和脱盐。它配备了（改良的聚醚砜）膜，确保低的非特异性吸附和高的回收率。当然，这个的前提是你选对了浓缩离心管。浓缩离心管，适合处理不同体积的样本。你可以根据你的样本量来选择。不过，如果样本浓度低体积大，可以选择较小容积的浓缩离心管多次重复加样离心。一旦样本体积确定，下一步就是选择适当的MWCO。对于蛋白质而言，建议所选滤膜的MWCO是欲截留分子大小的1/6-1/3。通常，截留孔径越小，流速越慢，但截留比例更大。超滤离心管可以去除混合物中的低分子量化合物，提高目标化合物的纯度。

超滤离心管采用PH适用范围普遍、蛋白结合力低、通量高、相容性强的PES聚醚矾膜制作而成。产品独特的设计与制作工艺有利于降低溶质极化导致滤膜结垢，防止过度离心使样本干掉而造成样本损失、降低离心时间，提高样本回收率(回收率>90%)、同时保持温和的浓缩环境以保持蛋白的活性和构象。公司提供多种截留分子量的超滤离心管(10kD、30kD、50kD、10OkD)，15ml离心过滤器可快速有效的浓缩纯化多达15ml的生物样品，，单支非灭菌包装满足实验室常用需求。同时公司也支持OEM定制。超滤离心管是一种将离心力和超滤技术相结合的一次性过滤装置，在生物实验中为蛋白质样本的浓缩、脱盐和缓冲交换提供可靠的数据，与层析、透析等方法相比，超滤离心管处理分子更加温和，不需要有机萃取，不会导致蛋白变性，操作快速且简单高效，在分离分子的同时，浓缩倍数得到了大幅提高，浓缩效率得到了明显提升。超滤离心管的优点包括速度快、效率高、易于操作和清洗等。重庆100K超滤离心管咨询

使用超滤离心管时应注意避免过度旋转造成机械损伤或故障，并及时维护保养设备。温州100K超滤离心管生产厂商

超滤离心管关于回收率的疑问？一般对浓度大于0.1mg/ml的溶质进行回收，回收率在90%以上。通常，样品损失是由于滤膜表面和料管表面的非特异性吸附造成的。为了获得较高的回收率，所选滤膜的截留率约为目标蛋白的1/3。超滤膜是一种非对称膜，其孔径呈正态分布。在高压离心下也可能发生泄漏，在这种情况下蛋白质可能会发生变形。因此，截留孔径越小，流速越慢，但回收率会更高。浓缩过程中有蛋白质沉淀，如何处理？如果蛋白质浓缩过快或过多，都可能造成蛋白质沉淀，浓缩后的蛋白质之后浓度不宜过高；对于对浓缩速度敏感、易沉淀的蛋白质，建议改进方法如下：1）降低离心速度，2）使用截留分子量较大的超滤膜3) 吹吸浓缩管，然后离心。温州100K超滤离心管生产厂商