Recombinant Human IL-8

T5核酸外切酶在基因克隆中的优势主要体现在以下几个方面：1.**高效性**：T5核酸外切酶依赖性组装（TEDA）方法在常规克隆中的效率与使用专有DNA聚合酶的商业In-Fusion方法相似，但高于使用T5核酸外切酶、PhusionDNA聚合酶和DNA连接酶的Gibson方法。2.**低成本**：TEDA方法每个反应使用0.04U的T5核酸外切酶，价格为0.25美分，具有很高的成本效益。3.**简单性**：TEDA方法的反应混合物非常简单，易于操作，这使得它在预算有限的实验室中尤其有用。4.**灵活性**：TEDA方法能够组装多个DNA片段，并在多个位点同时进行定点诱变，提供了一种灵活的克隆和突变方法。5.**阳性克隆率**：使用T5核酸外切酶的无缝克隆技术可以确保100%的阳性克隆率，这提高了实验的成功率。6.**协同作用**：在无缝克隆中，T5核酸外切酶与Phusion高保真DNA聚合酶和TaqDNA连接酶协同作用，通过切割、填补和连接三个步骤，高效地完成DNA片段的连接。7.**减少污染**：T5核酸外切酶可以降解碱裂解提取质粒中的变性DNA，减少超螺旋DNA的污染，提高DNA克隆和转染效率。这些优势使得T5核酸外切酶成为基因克隆中一个非常有价值的工具，尤其是在需要高效、低成本和操作简便的实验环境中。Probe qPCR Mix (2×) 支持多重qPCR，即在单个反应中同时检测多个靶标基因 。Recombinant Human IL-8,77aa/CXCL8

T7EndonucleaseI(T7EI)在CRISPR/Cas9基因编辑中的应用主要体现在突变体检测和基因编辑效率评估上。以下是T7EI在CRISPR/Cas9中的具体应用步骤和特点：1.**基因编辑效率评估**：-T7EI用于评估CRISPR-Cas9在给定的导向RNA靶位点上对细胞群体进行基因编辑的效率。-通过PCR扩增围绕CRISPR导向RNA靶位点的基因组DNA，如果CRISPR-Cas9介导的非同源末端连接（NHEJ）修复事件引入了突变，变性和退火将形成突变型和野生型PCR扩增子的异源双链DNA。2.**突变体检测**：-如果CRISPR/Cas9编辑成功在DNA上引入突变，则可与野生型DNA片段退火产生异质双链DNA。T7EI可以识别该DNA上的不完全配对的DNA位点然后进行双链切割，通过琼脂糖凝胶电泳即可显示酶切后的条带，从而半定量判定基因编辑效果。-T7EI能识别长度大于或等于2bp的插入、缺失或突变导致的错配DNA，不能识别1bp的插入、缺失或突变。3.**实验步骤**：-收集细胞并提取基因组DNA，然后使用PCR扩增期望编辑的基因组区域。扩增子的长度建议为0.5-1kb。-对扩增的DNA进行变性和退火复性，以产生异质双链DNA。-使用T7EI酶处理退火后的DNA产物，在37℃孵育15分钟。

Lambda核酸外切酶（LambdaExonuclease，简称λExonuclease）是一种具有特定特性和应用的酶，以下是其主要特点和应用：1.**特异性作用**：λExonuclease是一种5'→3'核酸外切酶，能选择性地沿5'→3'方向消化5'端磷酸化的双链DNA。2.**酶切活性**：对单链DNA和5'端未磷酸化修饰的DNA的酶切活性较低，不能从DNA的切刻或缺口处起始消化。3.**嗜磷酸性**：该酶具有非常强的嗜磷酸性，磷酸化的核酸链与非磷酸化的核酸链的切割效率相差达200倍以上。4.**切割效率**：Lambda核酸外切酶是一种具有高度持续性的碱性核酸外切酶，可以连续地将核酸切割成为单个碱基，切割比较高速率可以达到1000nt/S。5.**应用领域**：-生成单链PCR产物用于DNA测序。-DNA单链构象多态性(SSCP)分析。-滚环扩增。-从双链DNA片段生成单链DNA。-PCR产物的克隆。-质粒制备净化。6.**酶活性定义**：Oneunitisdefinedastheamountofenzymerequiredtoproduce10nmolofacid-solubledeoxyribonucleotidefromdouble-strandedsubstrateinatotalreactionvolumeof50μlin30minutesat37ºCin1XLambdaExonucleaseReactionBufferwith1μgsonicatedduplex[3H]-DNA。

BsuDNAPolymerase(LargeFragment,5U/μL)是一种来源于嗜热脂肪芽孢杆菌（Bacillussubtilis）的DNA聚合酶。这种酶保留了BsuDNAPolymeraseI的5'-3'聚合酶活性，但缺失了5'-3'核酸外切酶结构域，因此它具有链置换活性，可以用于重组酶聚合酶扩增（RPA）等恒温扩增技术。以下是BsuDNAPolymerase(LargeFragment,5U/μL)的一些关键特性和应用：1.**活性定义**：在37°C条件下，30分钟内将10nmol的dNTP掺入酸不溶性物质所需的酶量定义为1个活性单位（U）。2.**热失活条件**：75°C，20分钟。3.**酶保存液成分**：25mMTris-HCl,50mMNaCl,1mMDTT,0.1mMEDTA,50%Glycerol,pH7.4@25°C。4.**储存条件**：-25~-15°C保存，有效期2年。5.**注意事项**：-由于缺乏3'-5'核酸外切酶活性，BsuDNAPolymerase(LargeFragment)不能切除3'未配对的突出末端，因而不适用于生成平齐末端。-25°C时BsuDNAPolymerase(LargeFragment)保留50%的活性，是同温度下Klenow片段(3'-5'exo-)的两倍。6.**应用**：-随机引物法标记。-cDNA第二条链的合成。-单个dA的加尾。-链置换的DNA合成。FnCas12a包含约1300个氨基酸，含有RuvC-like结构域，同时具有DNA和RNA内切酶的活性。

BstDNA聚合酶对dUTP的耐受性对实验结果有以下影响：1.**防止交叉污染**：BstDNA聚合酶具有较高的dUTP耐受性，这意味着它可以在反应体系中添加dUTP/UDG酶防污染系统的情况下工作，有效防止LAMP产物的交叉污染，确保数据的准确性。2.**保持灵敏度和扩增效率**：即使在引入dUTP/UDG酶防污染系统，使用dUTP替换dTTP的情况下，BstDNA聚合酶的灵敏度及扩增效率不受影响。实验数据显示，在反应体系中添加dUTP对BstDNA聚合酶的扩增灵敏度和效率没有负面影响。3.**提高实验的可靠性**：由于BstDNA聚合酶能够在高浓度的dUTP存在下保持活性，这使得它在进行等温扩增时更加可靠，尤其是在需要防止DNA污染的实验中。4.**兼容dUTP/UDG系统**：BstDNA聚合酶对dUTP的耐受性好，高度兼容dUTP/UDG系统，这对于避免交叉污染和提高实验结果的准确性至关重要。综上所述，BstDNA聚合酶的高dUTP耐受性为等温扩增实验提供了一个重要的优势，即在保持高灵敏度和扩增效率的同时，能够有效防止交叉污染，从而提高实验结果的可靠性和准确性。CRISPR-Cas12a（以前称为Cpf1）是一种类II型V型内切酶，偏好富含胸腺嘧啶的原间隔短回文重复序列邻近基序。Recombinant Cys-Protein G 重组蛋白G

泛素蛋白的C末端通常通过酰胺键与靶蛋白的氨基团连接在一起，最常见的是与靶蛋白赖氨酸的ε氨基团相连。Recombinant Human IL-8,77aa/CXCL8

使用BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads（血液基因组DNA提取试剂盒，磁珠法）进行血液样本中基因组DNA的提取，主要步骤如下：1.**实验准备**：准备抗凝全血样本（如EDTA抗凝血），移液器及无菌，15ml离心管，无水乙醇，70%乙醇，干净的吸水纸，涡旋振荡器，金属浴/水浴，台式离心机等。2.**样本处理**：取适量血液样本，根据试剂盒要求，可能需要将血液体积调整至特定量，例如200μl，并可能需要加入PBS缓冲液。3.**裂解血液细胞**：向血液样本中加入蛋白酶K和细胞裂解液，涡旋混匀后，置于金属浴或水浴中进行裂解，通常在65°C孵育10-15分钟，并在此期间定期混匀。4.**DNA与磁珠结合**：向裂解后的样本中加入异丙醇和磁珠悬浮液，涡旋混匀后，室温放置一段时间，以便于基因组DNA与磁珠结合。5.**磁珠分离**：将样本置于磁力架上，待磁珠聚集后，小心移除上清液，去除杂质。6.**洗涤磁珠**：向磁珠中加入漂洗液和洗涤液，进行洗涤以去除残留的蛋白质和盐分，然后再次使用磁力架分离磁珠，移除洗涤液。