陕西生物制品支原体检测使用性验证

支原体是一类无细胞壁的原核微生物，直径只有 0.1-0.8 µm，常规 0.22 µm 细菌过滤器无法有效去除，其污染在细胞培养领域极为普遍。这类微生物会严重干扰培养细胞的表型特征与正常生长，给生物制品质量安全带来极大隐患，且与细菌、真菌污染不同，支原体污染通常不会导致培养液浑浊或细胞可见病变，需通过专业方法检测。基于此，FDA、WHO 等全球监管机构及 USP、EP、ChP 等主流药典均明确要求，对测试细胞库（主细胞库、工作细胞库）、下游细胞培养物、终产品及对照细胞等关键环节开展支原体污染筛查，确保生物制品生产全流程安全可控。

可比性验证是支原体检测 NAT 方法替代传统检测方法的关键依据，法规明确要求需将 NAT 法与药典规定的传统方法进行检测限（LOD）对比。若以 NAT 法替代培养法，需证实其检测限≤10CFU/mL；替代指示细胞培养法时，每种被测支原体的检测限需≤100CFU/mL。对比实验需采用相同样本同步开展 NAT 检测与传统方法检测，通过 CFU 可比性分析，确保两种方法的检测结果具有一致性。这一要求既保障了新方法的检测效能不低于传统标准，又为生物制品企业切换检测方法提供了合规依据，兼顾了效率提升与质量安全。

外源因子全自动核酸检测分析系统系统在数据追溯与合规管理方面进行了针对性设计，完美适配生物药行业的严格监管要求。系统内置三级权限管理机制，可对操作人员、检测项目、数据访问进行准确管控，同时具备完善的日志审计追踪功能，详细记录检测全流程的关键信息，确保数据可追溯、可核查，完全符合 21CFR Part11 法规要求。数据传输方面，系统支持与 LIMS 实验室信息管理系统无缝对接，实现检测数据的自动同步与集中管理，同时配备 USB 接口，可直接连接打印机打印实验结果，满足企业纸质记录存档需求。这些功能让支原体检测的每一个环节都处于合规管控之下，为企业应对监管检查、保障数据真实性提供了有力支持。

支原体 NAT 检测的特异性验证面临主要挑战：需设计覆盖多种支原体的 PCR 引物，而覆盖范围越广，越可能因支原体与革兰氏阳性菌的系统进化相关性，出现交叉检测现象，影响结果准确性。因此，特异性验证需重点排查非目标微生物的干扰，确保检测结果的专一性。稳健性验证同样关键，需证实检测方法在人为引入的微小参数变化（如反应温度、试剂浓度波动等）下，仍能保持结果稳定，避免因实验条件差异导致的检测偏差。这两项验证直接决定了 NAT 方法在不同实验室、不同操作场景下的适用性，是其获得法规认可的重要前提。

抑制物质检测是支原体培养法的关键前置环节，旨在排除供试品中抑制成分对检测的干扰。湖州申科按 USP 标准执行：对供试品进行一次抑制物质检测，若生产方法发生变化可能影响支原体检测结果，需重复该检测。检测通过两组平行实验对比实现：一组培养基加入供试品，另一组不加供试品，同步开展营养特性测试，判断供试品是否含抑制物质。若检出抑制物质，需通过适当方法中和或抵消其作用，例如使用不含抑制剂的底物，或将供试品稀释在更大体积的培养基中，确保支原体能在检测体系中正常生长，避免因抑制成分导致检测结果失真。

支原体检测中，污染引发的假阳性是生物制品企业的痛点。实验室环境控制不当、人员操作不规范、仪器耗材混用等因素，都可能导致核酸气溶胶污染或上样污染，进而影响检测结果。一旦出现假阳性，企业需花费大量时间排查验证，严重时会导致批次报废、影响其他产品正常生产。常规 NAT 检测法虽比传统培养法快速，但仍存在明显短板：需配备前处理设备、PCR 仪器等多重耗材，核酸提取、PCR 上机、高浓度产物处理等多个环节均有污染风险；实验准备需 40-60 分钟，操作耗时超 4 小时，每天只能完成 1-2 轮单一类型样本检测，且对场地和人员技能要求极高，需单独划分试剂准备区、样品制备区等多个区域，人力与场地成本高昂。